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技術(shù)文章 / article
ATCC細(xì)胞系復(fù)蘇要記住的細(xì)節(jié)及關(guān)鍵要點(diǎn)
原載自：www.yxqgjx.cn[技術(shù)資料頻道] 2026-02-06 瀏覽次數(shù)：30
在生命科學(xué)研究中，ATCC提供的標(biāo)準(zhǔn)化細(xì)胞系是實(shí)驗(yàn)可重復(fù)性和數(shù)據(jù)可靠性的基石。然而，從液氮罐中取出一支凍存管到成功建立貼壁或懸浮生長(zhǎng)的細(xì)胞群體，這一看似簡(jiǎn)單的“細(xì)胞復(fù)蘇”過(guò)程，實(shí)則暗藏諸多技術(shù)細(xì)節(jié)。稍有疏忽，輕則導(dǎo)致細(xì)胞活力下降、增殖緩慢，重則造成污染或死亡。以下是進(jìn)行ATCC細(xì)胞系復(fù)蘇時(shí)必須牢記的細(xì)節(jié)與關(guān)鍵要點(diǎn)。
一、快速解凍是核心原則
ATCC細(xì)胞通常采用程序降溫并保存于-196℃液氮中，其保護(hù)劑多為10%DMSO（二甲基亞砜）。DMSO在低溫下對(duì)細(xì)胞毒性較低，但一旦溫度回升至4℃以上，毒性迅速增強(qiáng)。因此，必須“快融慢凍”——復(fù)蘇時(shí)應(yīng)將凍存管立即放入37℃水浴中，輕輕搖晃，確保在1–2分鐘內(nèi)全融化。切忌在室溫下自然解凍或用高溫水加速，前者延長(zhǎng)DMSO毒性作用時(shí)間，后者可能造成熱休克。
二、稀釋與離心操作需溫和
解凍后，應(yīng)迅速用75%酒精擦拭管壁，移入生物安全柜。將細(xì)胞懸液緩慢加入預(yù)熱的培養(yǎng)基中（通常按1:5至1:10比例稀釋?zhuān)越档虳MSO濃度。此步驟需沿管壁緩緩滴加并輕柔混勻，避免劇烈吹打損傷脆弱的復(fù)蘇細(xì)胞。隨后，是否離心取決于細(xì)胞類(lèi)型：貼壁細(xì)胞建議低速離心（120–200×g，5分鐘）去除DMSO；而某些敏感懸浮細(xì)胞（如某些淋巴細(xì)胞系）則可直接接種，避免離心帶來(lái)的機(jī)械應(yīng)力。
三、使用正確的培養(yǎng)基與培養(yǎng)條件
ATCC為每株細(xì)胞提供詳細(xì)的培養(yǎng)指南，包括基礎(chǔ)培養(yǎng)基類(lèi)型、血清濃度、是否添加L-谷氨酰胺、抗生素等。務(wù)必嚴(yán)格按照說(shuō)明配制培養(yǎng)基，并提前預(yù)熱至37℃。此外，注意細(xì)胞是否需要特殊氣體環(huán)境或額外因子。一次傳代前，建議保留部分原始凍存管作為備份，以防復(fù)蘇失敗。
四、防污染與無(wú)菌意識(shí)貫穿全程
整個(gè)復(fù)蘇過(guò)程必須在超凈工作臺(tái)內(nèi)進(jìn)行，所有試劑、耗材均需無(wú)菌。操作者應(yīng)穿戴實(shí)驗(yàn)服、口罩和手套，動(dòng)作規(guī)范。特別注意凍存管外壁可能攜帶液氮污染物，解凍前務(wù)必消毒充分。若發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)基渾濁、pH異常變黃或鏡下有菌絲、運(yùn)動(dòng)顆粒，應(yīng)立即廢棄，避免交叉污染其他細(xì)胞。
五、復(fù)蘇后觀察與一次換液時(shí)機(jī)
細(xì)胞接種后，通常6–24小時(shí)內(nèi)完成貼壁（貼壁細(xì)胞）或恢復(fù)懸浮狀態(tài)。建議在復(fù)蘇后6–8小時(shí)一次在顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)與密度。一次換液時(shí)間很關(guān)鍵：過(guò)早可能沖走未貼牢的細(xì)胞；過(guò)晚則殘留DMSO持續(xù)毒害。一般推薦在12–16小時(shí)后更換新鮮培養(yǎng)基。
ATCC細(xì)胞系雖經(jīng)嚴(yán)格質(zhì)控，但其“重生”仍高度依賴(lài)操作者的細(xì)致與規(guī)范。記住：快速解凍、溫和處理、精準(zhǔn)培養(yǎng)、嚴(yán)防污染——這十六字口訣，是確保珍貴細(xì)胞資源成功復(fù)蘇、支撐后續(xù)實(shí)驗(yàn)順利開(kāi)展的根本保障。每一次成功的復(fù)蘇，都是對(duì)科研嚴(yán)謹(jǐn)性的最好詮釋。
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